TABELLA 161-1 RACCOLTA E MANIPOLAZIONE DEI CAMPIONI
PER LA DIAGNOSI DI LABORATORIO DELLE INFESTAZIONI PARASSITARIE

Campione

Parassita

Campione ottimale

Particolari del prelievo

Note

Cute

Onchocerca

Per i pazienti africani, usare frammenti cutanei prelevati da cosce, natiche e cresta iliaca

Per i pazienti non africani, usare frammenti cutanei da volto, scapola e natiche

Per il prelievo dei frammenti cutanei, disinfettare la cute con alcol, inserire un ago G25 subito al di sotto dell’epidermide, sollevarlo e tagliare via con un bisturi o con una lametta un piccolo lembo di tessuto; è possibile utilizzare un punch per biopsia sclerocorneale

Non deve verificarsi sanguinamento

Leishmania sp

E. histolytica

Margine dell’ulcera

Nell’amebiasi o nella leishmaniosi cercare i parassiti nella parete della lesione/ulcera, piuttosto che nel pus

Midollo osseo

Leishmania sp

Aspirati di midollo, milza, fegato, linfonodi o strisci di sovranatante

Centrifugare 5-10ml di sangue con anticoagulante e fare strisci di sovranatante

Colorante di Wright o di Giemsa

Sangue

Plasmodium sp

Strisci spessi o sottili di sangue capillare (dito od orecchio, con lancetta sterile) o 5-10ml di sangue fresco con anticoagulante

V. anche il testo

Raccogliere q 6h durante la malattia acuta

Accertarsi che l’alcol o altri disinfettanti siano evaporati prima di raccogliere il campione di sangue

Gli strisci si possono preparare dalla provetta di sangue con anticoagulante fino a 1h dopo il prelievo

Asciugare lentamente in una piastra con coperchio

Colorante di Giemsa

I vetrini devono essere ben puliti

Se c’è un qualsiasi dubbio circa le capacità di allestire un buon vetrino, prelevare in una provetta un po’ di sangue con anticoagulante e inviarlo al laboratorio per l’allestimento dei vetrini e la colorazione

Trypanosoma sp

Strisci sottili di sangue capillare o 5-6ml di sangue con anticoagulante

Colorante di Wright o di Giemsa

Filaria

1 ml di sangue con anticoagulante; se il primo campione è negativo, raccogliere 5-10ml di sangue e concentrarlo per centrifugazione o filtrazione

Wuchereria bancrofti e Brugia malayi: effettuare il prelievo tra le 22 e le 2 di notte

Loa loa, Dipetalonema perstans e Mansonella ozzardi: effettuare il prelievo tra le 10 e le 18

Colorante di Wright o di Giemsa

Sistema urogenitale

Vagina

Uretra

Secrezioni prostatiche

Trichomonas sp

1 tampone sterile in provetta, con una piccola quantità di soluzione salina sterile

Le donne non devono fare docce per i 3-4 gg precedenti la raccolta del campione

Inviare al laboratorio al più presto prima che i tricomonadi cessino di muoversi

Vescica

Schistosoma haematobium

Biopsia della zona attorno al trigono

SNC

Naegleria

Hartmannella

Acanthamoeba

Liquido cerebro spinale fresco

Raccolta asettica

Esaminare il campione appena possibile

Non refrigerare

Se non è possibile un esame immediato in microscopia diretta o in contrasto di fase, fissare i campioni in alcol polivinilico, fissativo di Schaudinn o formalina al 5-10%

Tratto intestinale

Biopsie

Digiunali

Duodenali

Rettali

Giardia

Strongyloides

Entamoeba

Schistosoma mansoni

Schistosoma japonicum

Cryptosporidium sp

Isospora

Cyclospora

Campione posto in vasetto o provetta sterili con un po’ di soluzione fisiologica o su di un vetrino da microscopio con coprioggetto

Per gli schistosomi: biopsia a livello della piega dorsale (valvola di Houston), a circa 9 cm dall’ano

Esaminare immediatamente

Per una diagnosi ottimale possono essere necessari strisci multipli; v. le specifiche sezioni per una spiegazione più dettagliata

Feci

 

E. histolytica

Altre amebe

3 campioni di feci fresche raccolte al mattino a giorni alterni

Esaminare le feci diarroiche o poco formate entro 15min

Conservare le feci ben formate refrigerate fino al momento dell’esame (v. anche il testo)

Fissare i vetrini in alcol polivinilico o timerosal-iodio-formalina

Giardia

3campioni di feci fresche raccolte al mattino a giorni alterni

Se la prima serie di 3 campioni risulta negativa, esaminarne altre 3, 1/sett.

Può essere necessario un aspirato duodenale (v. testo)

Cryptosporidium sp

3 campioni di feci fresche raccolti giornalmente o a giorni alterni

Concentrare le feci

Una biopsia digiunale può essere utile nei soggetti con feci negative

Maneggiare con attenzione; le feci fresche o conservate in bicromato sono infette

Se non è possibile l’esame immediato, conservare in bicromato di potassio al 2,5% o in formalina tamponata al 10%

Colorante acidoresistente modificato, Giemsa o anticorpo monoclonale specifico

Isospora

3campioni di feci fresche raccolti giornalmente o a giorni alterni

Concentrare le feci

Colorante acidoresistente modificato

Cyclospora

3campioni di feci fresche raccolti giornalmente o a giorni alterni

Concentrare le feci

Colorante acidoresistente modificato; le oocisti sono autofluorescenti (emettono luce di colore verde)

Trichuris

Ascaris

Anchilostoma

Strongyloides

Vermi a nastro

Fasciole

Fino a 3campioni di feci raccolti giornalmente

Se necessario, i campioni possono essere refrigerati

Non è fondamentale l’esame immediato, ma le larve nate dalle uova di anchilostoma nelle feci vecchie possono essere confuse con quelle di Strongyloides

Enterobius

Uova su nastro di cellophane

Raccogliere dalla regione perianale al mattino, prima dell’evacuazione intestinale e prima di lavarsi

Sigmoido scopia (proctosco pia)

E. histolytica

Materiale fresco grattato con una curette o un cucchiaio di Volkmann o mucosa prelevata con uno strumento chirurgico, o un aspirato delle lesioni con una pipetta sierologica da 1 ml con un bulbo di gomma

Non sono adatti i tamponi con punta in cotone

Se il paziente non ha evacuato da poco prima della sigmoidoscopia, purgarlo e ritardare la procedura di 2 o 3h.

Esaminare il prelievo immediatamente o conservarlo per un ulteriore esame

Tratto respiratorio

Escreato

Paragonimus sp

Escreato fresco

Istruire adeguatamente il paziente sulla procedura di raccolta

Aspirati (tracheale, bronchiale)

E. histolytica

Strongyloides

Echinococcus

Anchilostoma

Ascaris

Qualsiasi materiale aspirato; anche materiale da drenaggio

Se si sospetta l’amebiasi, il campione va esaminato al più presto possibile oppure va conservato per un esame successivo

Biopsia polmonare

Paragonismus sp

Biopsia polmonare a cielo aperto

Biopsia percutanea in fluoroscopia

Raccogliere in un contenitore sterile

Se viene effettuata un’agobiopsia aggiungere soluzione fisiologica sterile


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