TABELLA
161-1 RACCOLTA E MANIPOLAZIONE DEI CAMPIONI
PER LA DIAGNOSI DI LABORATORIO DELLE INFESTAZIONI PARASSITARIE
Campione |
Parassita |
Campione ottimale |
Particolari del prelievo |
Note |
Cute |
Onchocerca |
Per i pazienti africani, usare frammenti cutanei prelevati da cosce, natiche e cresta iliaca Per i pazienti non africani, usare frammenti cutanei da volto, scapola e natiche |
Per il prelievo dei frammenti cutanei, disinfettare la cute con alcol, inserire un ago G25 subito al di sotto dell’epidermide, sollevarlo e tagliare via con un bisturi o con una lametta un piccolo lembo di tessuto; è possibile utilizzare un punch per biopsia sclerocorneale |
Non deve verificarsi sanguinamento |
Leishmania sp E. histolytica |
Margine dell’ulcera |
Nell’amebiasi o nella leishmaniosi cercare i parassiti nella parete della lesione/ulcera, piuttosto che nel pus |
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Midollo osseo |
Leishmania sp |
Aspirati di midollo, milza, fegato, linfonodi o strisci di sovranatante |
Centrifugare 5-10ml di sangue con anticoagulante e fare strisci di sovranatante |
Colorante di Wright o di Giemsa |
Sangue |
Plasmodium sp |
Strisci spessi o sottili di sangue capillare (dito od orecchio, con lancetta sterile) o 5-10ml di sangue fresco con anticoagulante V. anche il testo |
Raccogliere q 6h durante la malattia acuta Accertarsi che l’alcol o altri disinfettanti siano evaporati prima di raccogliere il campione di sangue Gli strisci si possono preparare dalla provetta di sangue con anticoagulante fino a 1h dopo il prelievo Asciugare lentamente in una piastra con coperchio |
Colorante di Giemsa I vetrini devono essere ben puliti Se c’è un qualsiasi dubbio circa le capacità di allestire un buon vetrino, prelevare in una provetta un po’ di sangue con anticoagulante e inviarlo al laboratorio per l’allestimento dei vetrini e la colorazione |
Trypanosoma sp |
Strisci sottili di sangue capillare o 5-6ml di sangue con anticoagulante |
Colorante di Wright o di Giemsa |
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Filaria |
1 ml di sangue con anticoagulante; se il primo campione è negativo, raccogliere 5-10ml di sangue e concentrarlo per centrifugazione o filtrazione |
Wuchereria bancrofti e Brugia malayi: effettuare il prelievo tra le 22 e le 2 di notte Loa loa, Dipetalonema perstans e Mansonella ozzardi: effettuare il prelievo tra le 10 e le 18 |
Colorante di Wright o di Giemsa |
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Sistema urogenitale Vagina Uretra Secrezioni prostatiche |
Trichomonas sp |
1 tampone sterile in provetta, con una piccola quantità di soluzione salina sterile |
Le donne non devono fare docce per i 3-4 gg precedenti la raccolta del campione Inviare al laboratorio al più presto prima che i tricomonadi cessino di muoversi |
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Vescica |
Schistosoma haematobium |
Biopsia della zona attorno al trigono |
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SNC |
Naegleria Hartmannella Acanthamoeba |
Liquido cerebro spinale fresco |
Raccolta asettica Esaminare il campione appena possibile Non refrigerare |
Se non è possibile un esame immediato in microscopia diretta o in contrasto di fase, fissare i campioni in alcol polivinilico, fissativo di Schaudinn o formalina al 5-10% |
Tratto intestinale Biopsie Digiunali Duodenali Rettali |
Giardia Strongyloides Entamoeba Schistosoma mansoni Schistosoma japonicum Cryptosporidium sp Isospora Cyclospora |
Campione posto in vasetto o provetta sterili con un po’ di soluzione fisiologica o su di un vetrino da microscopio con coprioggetto Per gli schistosomi: biopsia a livello della piega dorsale (valvola di Houston), a circa 9 cm dall’ano |
Esaminare immediatamente |
Per una diagnosi ottimale possono essere necessari strisci multipli; v. le specifiche sezioni per una spiegazione più dettagliata |
Feci
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E. histolytica Altre amebe |
3 campioni di feci fresche raccolte al mattino a giorni alterni |
Esaminare le feci diarroiche o poco formate entro 15min Conservare le feci ben formate refrigerate fino al momento dell’esame (v. anche il testo) |
Fissare i vetrini in alcol polivinilico o timerosal-iodio-formalina |
Giardia |
3campioni di feci fresche raccolte al mattino a giorni alterni |
Se la prima serie di 3 campioni risulta negativa, esaminarne altre 3, 1/sett. Può essere necessario un aspirato duodenale (v. testo) |
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Cryptosporidium sp |
3 campioni di feci fresche raccolti giornalmente o a giorni alterni |
Concentrare le feci Una biopsia digiunale può essere utile nei soggetti con feci negative Maneggiare con attenzione; le feci fresche o conservate in bicromato sono infette |
Se non è possibile l’esame immediato, conservare in bicromato di potassio al 2,5% o in formalina tamponata al 10% Colorante acidoresistente modificato, Giemsa o anticorpo monoclonale specifico |
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Isospora |
3campioni di feci fresche raccolti giornalmente o a giorni alterni |
Concentrare le feci |
Colorante acidoresistente modificato |
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Cyclospora |
3campioni di feci fresche raccolti giornalmente o a giorni alterni |
Concentrare le feci |
Colorante acidoresistente modificato; le oocisti sono autofluorescenti (emettono luce di colore verde) |
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Trichuris Ascaris Anchilostoma Strongyloides Vermi a nastro Fasciole |
Fino a 3campioni di feci raccolti giornalmente |
Se necessario, i campioni possono essere refrigerati Non è fondamentale l’esame immediato, ma le larve nate dalle uova di anchilostoma nelle feci vecchie possono essere confuse con quelle di Strongyloides |
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Enterobius |
Uova su nastro di cellophane |
Raccogliere dalla regione perianale al mattino, prima dell’evacuazione intestinale e prima di lavarsi |
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Sigmoido scopia (proctosco pia) |
E. histolytica |
Materiale fresco grattato con una curette o un cucchiaio di Volkmann o mucosa prelevata con uno strumento chirurgico, o un aspirato delle lesioni con una pipetta sierologica da 1 ml con un bulbo di gomma Non sono adatti i tamponi con punta in cotone |
Se il paziente non ha evacuato da poco prima della sigmoidoscopia, purgarlo e ritardare la procedura di 2 o 3h. Esaminare il prelievo immediatamente o conservarlo per un ulteriore esame |
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Tratto respiratorio |
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Escreato |
Paragonimus sp |
Escreato fresco |
Istruire adeguatamente il paziente sulla procedura di raccolta |
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Aspirati (tracheale, bronchiale) |
E. histolytica Strongyloides Echinococcus Anchilostoma Ascaris |
Qualsiasi materiale aspirato; anche materiale da drenaggio |
Se si sospetta l’amebiasi, il campione va esaminato al più presto possibile oppure va conservato per un esame successivo |
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Biopsia polmonare |
Paragonismus sp |
Biopsia polmonare a cielo aperto Biopsia percutanea in fluoroscopia |
Raccogliere in un contenitore sterile Se viene effettuata un’agobiopsia aggiungere soluzione fisiologica sterile |